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(In Anlehnung an den 8.
Forschungsbericht der Universität Regensburg)
Forschungstätigkeiten der
Arbeitsgruppe:
Leitung: Prof. Dr. Günter
Hauska
Thema: Das P840-Reaktionszentrum
von Grünen Schwefelbakterien
Mitarbeiter/in: Monika
Kammerer; Zusammenarbeit mit Prof. Dr. Nathan Nelson (Tel Aviv, Israel),
Prof. Dr. Georgios Tsiotis (Iraklion/Griechenland, 2D-Kristalliasation)
Beschreibung: Photosynthetische
Reaktionszentren (RCs) kommen in zwei Typen vor, entweder mit FeS-Zentren
(Typ 1 = FeS-Typ) oder mit Chinonen (Typ 2 = Q-Typ) als terminale Elektronenakzeptoren.
Beide besitzen eine heterodimere Kernstruktur, wie die hochaufgelöste
Röntgenkristallographie sowohl vom RC der Purpurbakterien (Q-Typ)
als auch vom cyanobakteriellen Photosyszem I (FeS-Typ) zeigt. Zwei zwar
verwandte, aber unterschiedliche Membranproteine halten einen doppelten
Satz der Redoxkomponenten in einer pseudosymmetrischen, transmembranen
Anordnung. Warum? Wir gehen dieser zentralen, ungeklärten Frage mittels
des P840-RC von grünen Schwefel nach. Zusammen mit dem RC der Heliobakterien
stellt es eine homodimere Form des FeS-Typs dar, mit zwei identischen Membranproteinen.
Einzelpartikelanalyse mittels STEM (scanning transmission electron microscopy)
bestätigt eine homodimere Struktur, eine endgültige Klärung
erhoffen wir uns von der 2d- und 3d-Kristallisation. Neben der Struktur
scheint das P840-RC auch im Electrontransfer einfacher als sein gegenstück
im PS1 zu sein. Mittels EPR- und anderen Techniken verfolgen wir Hinweise
darauf, daß ein Chinon in grünen Schwefelbakterien nicht so
wie Phyllochinon in PS1 für den Elektronentansport zu den FeS-Zentren
unerläßlich, möglicherweise gar nicht erforderlich ist
- möglicherweise wirkt es nur im zyklischen Elektronetransport.
Leitung: Prof. Dr.Günter
Hauska, PD Dr.Iris Maldener
Thema: Funktion und
Organisation des Cytochrome b6f-Komplexes in Heterocysten-bildenden Cyanobakterien
Mitarbeiter/in:
Monika Kammerer
Beschreibung: Cytochrome
bc-Komplexe wirken als Quinol oxidierende, Protonen pumpende Oxidoreduktasen
in vielen Elektronentransportketten, von Eu- und Archaebakterien bis zu
den Mitochondrien und Chloroplasten der Eukaryoten. Unter ihnen ist der
Cytochrome b6f-Komplex bei der oxigenen Photosynthese von Pflanzen und
Cyanobakterien für die Elektronenübertragung von PSII auf PSI
verantwortlich. Er enthält vier essentielle Proteinuntereinheiten
(Cytochrom f/PetA, Cytochrom b6/PetB, das Rieske FeS-Protein/PetC und Untereinheit
IV/PetD). In Cyanobakterien werden diese von den Transkriptionseinheiten
petCA und petBD kodiert. Zusätzlich sind drei bis vier hydrophobe,
sehr kleine Polypeptide bekannt (PetG, PetL, PetM und PetN), welche am
Zusammenbau, und der Stabilität und/oder an der Modulation der Aktivität
beteiligt sein könnten. Da der b6f-Komplex in Cyanobakterien auch
in der Atmung wirkt, erfüllte er eine zentrale Rolle im Stoffwechsel.
Verschiedene filamentöse
Cyanobakterienarten, wie Anabaena variabilis, können unter mikroaeroben
Bedingungen atmosphärischen Stickstoff fixieren indem sie die Nitrogenase
in spezialisierten Zellen vor Sauerstoff schützen. Diese Heterocysten
entwickeln sich unter N-Mangel aus den vegetativen Zellen in regelmäßigen
Abständen entlang des Filaments. Sie besitzen eine verdickte Zellhülle
(Drosselung des O2-Eintritts), eine gesteigerte O2-Atmung und PSII ist
inaktiv (keine O2-Entwicklung). PSI bleibt für die ATP-Produktion
neben der durch die Atmung erhalten und damit auch der b6f-Komplex. Während
der Differenzierung kommt es zur dramatischen Veränderung in der Expression
einer Reihe von Proteinen. So konnte auch eine vorübergehend gesteigerte
Transkription von petCA und petBD beobachtet werden. Ob es zu einer spezifischen
Regulation des b6f-Komplexes in Heterocysten kommt ist allerdings noch
unklar. In diesem Zusammenhang interessiert uns, ob die kleinen Untereinheiten,
oder auch das kürzlich in Anabaena entdeckte, zweite Gen für
ein Rieske FeS-Protein dabei eine Rolle spielen.
Förderung: DFG (Ma 1359/3)
Leitung: Prof. Dr.
Günter Hauska
Thema: Sulfidoxidation
bei Bakterien
Mitarbeiter/in:
Thomas Schödl, PD Dr. Iris Maldener, PD Dr. Rita Grandori (Universität
Linz), Dr. Yosepha Shahak (Volcani Center, Bet Dagan, Israel)
Beschreibung: Bestimmte
Blaualgen schalten unter extremen Bedingungen, z.B. in austrocknenden Pfützen
der Wüstenregion, von Wasseroxidation auf Schwefelwasserstoffoxidation
um. Ihre Photosynthese erinnert dann an die der grünen Schwefelbakterien
oder mancher Purpurbakterien. In binationaler Zusammenarbeit ist es uns
gelungen, nachzuweisen, daß die Schwefelwasserstoffoxidation sowohl
in Blaualgen, als auch in den Bakterien über Chinon und den Cytochrom
bc1-Komplex abläuft. Aus der Blaualge Oscillatoria, sowie aus dem
Purpurbakterium Rhodobacter wurde darüber hinaus eine Sulfid-Chinon
Reduktase (SQR) zur Homogenität gereinigt und als ein neuartiges Flavoprotein
charakterisiert. Das Gen für die SQR aus Rhodobacter wurde kloniert,
sequenziert und in E. coli unter Beibehaltung der Funktion fremdexprimiert.
Über die Unterbrechung des sqr-Gens in Rhodobacter wurde gezeigt,
daß die SQR für das photoautotrophe sulfidabhängige Wachstum
essentiell ist. Inzwischen konnten wir SQR-Aktivität außerdem
in Membranen weiterer phototropher sowie chemotropher Prokaryonten nachweisen.
Wir wenden uns nun der Regulation der SQR-Expression und dem katalytischen
Mechanismus der Sulfidoxidation zu. In Zusammenarbeit mit Prof. Dr. Otto
Wolfbeis (Institut für Analytische Chemie, Chemo- und Biosensorik)
versuchen wir, die Fluoreszenz der SQR als Biosensor für Sulfid zu
nutzen.
Literatur:
Griesbeck C., Hauska G. and Schütz
M. (2000) Biological Sulfide Oxidation: Sulfide-Quinone Reductase (SQR),
the Primary Reaction, Recent Research Developments in Microbiology 4, 179-203
(Download
PDF-file)
Förderung: DFG (Ha 852/10-4),
Graduiertenkolleg "Sensorische Photorezeptoren"
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